TUNEL检测
TUNEL 法测凋亡操作步骤
一、TUNEL检测原理
TUNEL 细胞凋亡检测试剂盒是采用非同位素方法来检测细胞在凋亡过程中DNA 的断裂情况，可在原位快速准确地检测单个凋亡细胞。本试剂盒适用于组织样本（石蜡包埋、冰冻和超薄切片）和细胞样本（细胞涂片）的凋亡原位检测。
其原理是细胞凋亡发生时，内源性核酸酶激活，使DNA的双链断裂或一条链出现缺口，产生一系列3 ’ -OH末端，在脱氧核糖核苷酸末端转移酶（ TdT ）作用下，组织细胞原位DNA切口可被标记上生物素- dUTP ，即TUNEL（Terminal deoxynucleotidyl Transferase Biotin- dUTP Nick End Labeling），可与连接了的辣根过氧化酶的链霉亲和素（Streptavidin-HRP）特异结合，在辣根过氧化酶底物二氨基联苯胺（DAB）的存在下，显示为棕色（过氧化物酶活性），特异准确地定位正在凋亡的细胞，在普通显微镜下即可观察和计数凋亡细胞；由于正的或正在增殖的细胞几乎没有DNA 的断裂，因而没有3'-OH 形成，很少能够被染色。
二、试剂盒组份
组 份 10 assays 25 assays 储存条件
A：Equilibration Buffer 1.0 mL 2.5 mL -20 ℃
B： Biotinylated Nucleotide Mix 10 μL 25 μL -20 ℃
C： TdT Enzyme 10 μL 25 μL -20 ℃
D：500×Proteinase K 10 μL 25 μL -20 ℃
20×SSC 15 mL 38 mL 4 ℃
E：Streptavidin-HRP 10 μL 25 μL 4 ℃
F：20×DAB Substrate Buffer 50 μL 125 μL 4 ℃
G：20×DAB Chromogen 50 μL 125 μL 4 ℃
H：20×Hydrogen Peroxide 50 μL 125 μL 4 ℃
三、操作流程
1.操作流程概览
2.细胞样本制备
准备：
● PBS：8.0g NaCl ， 0.2 g KCl ， 1.44g Na2HPO4，0.24g KH2PO4，溶于800ml去离子水中， HCl 调pH至7.4，加水 定容至 1L。
● 固定液：4%多聚甲醛溶于pH7.4的PBS中，新鲜配制；
● 封闭液：3%H2O2溶于甲醇；
● 细胞膜通透液：0.1%TritonX-100溶于PBS，新鲜配制；
操作步骤：
1)经过实验处理的 细胞爬片或 细胞涂片，自然晾干；
2)室温固定15min~30min；PBS漂洗3×5min；
3)浸入封闭液中，室温封闭10min；PBS漂洗3×5min；
4)浸入细胞膜通透液中，室温30sec~2min；
5)进行标记反应。
3.石蜡包埋组织切片预处理
准备：
● 石蜡切片脱蜡至水：二甲苯脱蜡2×10min，梯度乙醇水合（100%、95%、90%、80%、70%）；
● 蛋白酶K工作液：2 μL500×蛋白酶K + 998 μL PBS；
● 固定液：4%多聚甲醛溶于pH7.4的PBS中，新鲜配制；
● 封闭液：3%H2O2溶于甲醇。
操作步骤：
1)石蜡包埋的组织切片按常规方法脱蜡至水；
2)PBS漂洗3×5min；
3)加入蛋白酶K工作液，37℃反应15~30min；PBS漂洗3×5min；
4)（选择进行）室温固定15min~30min；PBS漂洗3×5min；
5)浸入封闭液中，室温封闭10min，PBS漂洗3×5min；
6)进行标记反应。
4.冰冻组织切片预处理
准备：
● 固定液：4%多聚甲醛溶于pH7.4的PBS中，新鲜配制；
● 封闭液：3%H2O2溶于甲醇；
● 细胞膜通透液：0.1%TritonX-100溶于PBS，新鲜配制；
操作步骤：
1)冰冻切片浸入固定液，室温固定10min；PBS漂洗3×5min；
2)浸入封闭液中，室温封闭10min；PBS漂洗3×5min；
3)浸入通透液中，室温30sec~2min；
4)进行标记反应。
5.阳性对照和阴性对照的准备
TUNEL检测时需要设立阳性对照和阴性对照，以显示实验的客观性和准确性。
1)阳性对照样本的处理（选择进行）
DNaseI 反应液（用户自备）： （10U-3000U DNase I；40mM Tris-HCl pH 7.9；
10 mM NaCl ；6mM MgCl2；10mM CaCl2）
组织样本经过蛋白酶K处理或者通透液处理，PBS浸洗后，加入100 μL DNaseI 反应液，室温孵育10~30min，用去离子水彻底清洗 玻 片，浸入PBS漂洗5min，进行标记反应。
2)阴性对照样本的处理
在进行标记反应过程配制 TdT 酶反应 液时，不加入 TdT 酶，其余步骤相同。
四、标记和显色反应
以下操作在湿盒内进行。
1.预处理好的样本经过PBS漂洗后，用滤纸轻轻吸去样本周围液体；
2.每个样本滴加100 μL TdT 酶反应 液，于37＆#61616;C避光反应60min；
TdT 酶反应 液的准备（即用即配）：
成分 标准100 μL/片 切片数 总体积
Equilibration Buffer 98 μL × =
Biotinylated Nucleotide Mix 1 μL × =
TdT Enzyme 1 μL × =
阴性对 照片不加 TdT 酶。
3.用去离子水按1：10稀释20×SSC，进行终止反应，室温15min；然后PBS漂洗3×5min；
4.浸入0.3%H2O2/PBS中封闭内源性过氧化物酶活性，室温孵育3~5min；PBS漂洗3×5min；
5.滴加100 μL Streptavidin-HRP工作液（按1：500稀释为工作液），于37℃反应30~60min；
6.PBS漂洗3×5min；
7.滴加DAB显色液：
成分 100 μL/片 切片数 总体积
20×DAB Substrate Buffer 5 × =
20×DAB Chromogen 5 × =
20×Hydrogen Peroxide 5 × =
ddH2O 85 × =
8.用去离子水漂洗数次；（选择进行复染细胞核）；
9.中性树胶封片，显微镜下观察。
注意事项：
1.PBS清洗后，请尽量去除PBS液体再进行下一步反应；
2.避免载波片上的样本干燥造成实验失败；
3.TdT 酶反应 液应即用即配，在冰上进行，不宜长期保存；
4.复染细胞核可以用甲基绿染液（用户自备）。